熒光PCR試劑盒在現代分子生物學領域占據著關鍵地位，其以準確、靈敏且高效的特性，為基因檢測、病原體鑒定、遺傳分析等諸多研究與應用提供了強有力的技術支撐。深入探究其基本工作原理與顯著優(yōu)點，有助于我們更好地理解并運用這一強大工具。熒光PCR技術是在常規(guī)PCR基礎上，通過引入熒光標記的探針或染料，實現對PCR擴增過程的實時監(jiān)測。在反應體系中，除了常規(guī)的模板DNA、引物、TaqDNA聚合酶以及dNTPs等成分外，還包含特定的熒光物質。
 

　　(一)熒光探針法
 

　　該方法利用特異性寡核苷酸探針，其兩端分別標記熒光基團和淬滅基團。在未進行PCR擴增時，探針保持完整，熒光基團靠近淬滅基團，后者通過熒光共振能量轉移(FRET)抑制熒光發(fā)射，此時檢測不到熒光信號。當PCR反應進行到退火步驟時，引物與模板結合并延伸，TaqDNA聚合酶的5'→3'外切酶活性會切斷探針，使得熒光基團與淬滅基團分離，熒光信號得以釋放并被檢測系統(tǒng)捕捉。隨著每個循環(huán)新鏈合成，更多探針被切斷，熒光強度逐漸增強，且該強度與擴增產物量呈正相關，借此可對目標DNA進行定量分析。
 

　　(二)SYBR Green I 染料法
 

　　SYBR Green I 是一種能特異性結合雙鏈 DNA 小溝的熒光染料。在 PCR 反應初期，由于沒有雙鏈 DNA 生成，SYBR Green I 以游離態(tài)存在，熒光信號微弱。隨著 PCR 循環(huán)的推進，模板 DNA 不斷擴增形成雙鏈，SYBR Green I 與之結合后，構象改變導致熒光大大增強。不過，這種染料也能與非特異性雙鏈 DNA 結合，所以在實驗中常需通過熔解曲線分析來區(qū)分特異性擴增產物與非特異性擴增或引物二聚體。熔解曲線是通過逐漸升高溫度使雙鏈 DNA 解鏈，同時監(jiān)測熒光變化而繪制，特異性擴增產物的熔解溫度相對恒定，據此可驗證反應的特異性。

 

　　熒光pcr試劑盒的使用注意事項：
 

　　1.試劑方面
 

　　-嚴格按照說明書操作：使用試劑盒前仔細閱讀說明書，按說明書要求進行樣本采集、處理、儲存和運輸等操作，如血液樣本需用特定抗凝管采集，組織樣本要及時處理，所有樣本低溫儲存運輸防DNA降解。
 

　　-避免試劑污染與交叉污染：使用無菌技術和一次性移液器槍頭、吸頭，不同實驗試劑分開存放并標記清楚；定期對實驗室清潔消毒，減少環(huán)境中微生物污染；注意試劑的保存條件，一般需在-20℃以下保存，避免反復凍融影響試劑活性。
 

　　-試劑使用前處理：使用前將試劑混勻，確保性能穩(wěn)定可靠，可定期對試劑進行質檢。
 

　　2.實驗操作方面
 

　　-防止樣本污染：實驗人員應戴一次性手套、帽子等，避免頭發(fā)、皮膚細胞等污染樣本；樣品處理時盡量使用較長吸頭取樣，防止移液器污染導致交叉污染；加樣后將熒光定量PCR管瞬時離心，不要在管上做標志，手勿碰管蓋采光部位。
 

　　-準確加樣與操作規(guī)范：移液器使用前確保量程合適并校準準確，加樣時保持垂直緩慢吸取液體避免氣泡和誤差；配制反應液時試劑置于冰上，避免強光照射，所有試劑加到管底，配制完畢后低速離心數秒；分樣前樣品瞬離，加樣時關閉生物安全柜照明，在冰盒上操作，盡量避免直射光源。
 

　　-嚴格控制反應條件：根據目標分子和試劑盒要求準確設置PCR反應的溫度、時間和循環(huán)次數等條件，以確保反應的特異性和效率。
 

　　3.實驗室環(huán)境與設備方面
 

　　-實驗室分區(qū)管理：實驗室應實行嚴格的分區(qū)管理制度，如試劑儲存和準備區(qū)、標本制備區(qū)、擴增區(qū)、擴增產物分析區(qū)等明確區(qū)分，各區(qū)域設備、物品不混用，工作人員離開各區(qū)域時不得將工作服帶出，清潔按特定方向進行，不同區(qū)域有各自清潔用具防止交叉污染。
 

　　-設備維護與校準：定期對熒光定量PCR儀進行清潔、消毒、校準和檢修，確保其性能穩(wěn)定可靠，保證熒光信號檢測的準確性；儀器使用時注意安全操作，避免意外事故。